RNA 双重检测
交付率达85%
三重质检保障
保驾护航
支持重做一次
拓宽分析维度
IncRNA检测
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01 细胞核悬液制备
组织解离成细胞悬液提核或组织直接提核
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02 Tn5酶转座处理
通过Tn5酶进行基因组片段化
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03 油包水标记
通过Barcode Beads标记同一细胞核内的ATAC片段和RNA,RNA基于半随机引物逆转录标记,ATAC序列基于连接策略标记;
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04 预扩增
对标记产物(RNA和ATAC片段)进行富集;
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05 文库构建
RNA文库基于Truseq Read1SeqPrimer和模板转换引l物扩增后打断建库; ATAC文库基于Truseq Read1 SeqPrime r X Nextera Read2 SeqPrimer进行扩增建库;
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06 上机测序
获得ATAC和RNA两个文库,使用高通量测序仪测序
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07 数据分析和可视化
质控和下游分析

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Q. 为什么建议用新鲜的样本解离提核?冻存样本是不是可以做?
新鲜样本可以先解离再提核,解离后如果杂质比较多或是细胞活率低,可以做优化处理,在细胞质量比较好的基础上再提核,这样得到的ATAC数据质量会更好; 如果样本已经冻存就没办法做解离,只能组织提核,首先要考虑的是样本是否会存在降解,其次,细胞核的优化方法相对比较有限,处理时间长也容易导致RNA降解,并且我们不太好判断提出来的是活细胞还是死细胞的细胞核,常规单细胞组织提核上机不管结果好坏都属于风险上机,所以风险相对较高。 -
Q. ATAC多组质控环节有哪些?
细胞&细胞核悬液质检,油包水状态和体积质控,cDNA质控,表达和ATAC文库质控,测序质量与QC质控。 -
Q. 是一个细胞里面既测RNA又测ATAC吗?是怎么实现一个样本多个组学的检测的
是从同一个细胞中共检测ATAC片段和RNA的,对于RNA是凝胶微珠末端的半随机引物捕获RNA,对于ATAC片段,我们是基于连接的策略进行捕获标记,凝胶微珠末端7 bp和Tn5酶的接头序列是我们专门设计的,添加一些Bridge 序列辅助连接。这样就可以同时捕获一个细胞的ATAC片段和RNA,并且他们的barcode 序列都是对应的 -
Q. 该技术推荐测多少数据量?
目前我们推荐ATAC和RNA文库各测100G数据量,足够下游分析,如果有加测需求可以根据饱和度适当增加测序量。 -
Q. 单细胞ATAC一胞双组相对于单细胞ATAC单组学的优势是什么?
一胞双组 ATAC+RNA 是在同一个细胞里同时捕获染色质开放和基因表达,不用跨细胞拼凑数据。 第一,能把表观调控和基因表达直接对应起来,形成真实的调控因果关系,结论比分开测序更精准; 第二,双组学联合分析,能分辨出单组学区分不了的稀有细胞亚群,细胞注释更精细; 第三,避开了传统多组学靠算法推算、匹配相似细胞的难题,从实验层面减少计算误差,对生信分析更友好、结果更稳。 -
Q. 为什么建议用新鲜的样本解离提核?冻存样本是不是可以做?
新鲜样本可以先解离再提核,解离后如果杂质比较多或是细胞活率低,可以做优化处理,在细胞质量比较好的基础上再提核,这样得到的ATAC数据质量会更好; 如果样本已经冻存就没办法做解离,只能组织提核,首先要考虑的是样本是否会存在降解,其次,细胞核的优化方法相对比较有限,处理时间长也容易导致RNA降解,并且我们不太好判断提出来的是活细胞还是死细胞的细胞核,常规单细胞组织提核上机不管结果好坏都属于风险上机,所以风险相对较高。 -
Q. 什么是 Reads?什么是 Fragment?什么是 Peak?
1) Reads: 测序仪直接产出的原始数据,即一段短的 DNA 序列。在双端测序中,一个 DNA/RNA 片段会从两端各产生一条 Read,分别称为 R1 和 R2。 2) Fragment: 实验中 Tn5 转座酶在基因组开放区域切割产生的原始 DNA 分子。双端测序中一对匹配的 Reads(R1 和 R2)可以定位出一个 Fragment 片段。 3) Peak: 在基因组上,Fragments 的起始位点(即 Tn5 的切割位点)会密集地富集在开放染色质区域。这些富集区域在经过统计学分析后,被识别为一个个显著的“峰”。 -
Q. 我用 Signac 官网教程处理 SeekArc 数据,教程里面有用到一个 singlecell.csv 文件,你们没提供这个文件给我呀?
老师用的应该是处理 scATAC-seq 单组学数据的教程,在单组学教程里面,singlecell.csv 文件是为了计算 pct_reads_in_peaks 指标,从而实现细胞过滤,Signac 有提供一胞双组学的指定教程 https://stuartlab.org/signac/articles/pbmc_multiomic -
Q. 中性粒细胞会如何影响多组学数据的质控指标?
中性粒细胞被激活 (如受炎症刺激) 时,染色质会解聚并释放到细胞外,形成与组蛋白结合的“中性粒细胞胞外诱捕网” (NETs),以清除病原体。这类事件会产生大量、分布随机的小 DNA 片段,在测序数据中表现为: TSS 富集度、overlap Peaks 等指标显著下降。 染色体上这些碎片的占比可高达 60%,且大部分难以被归入 ATAC 调用的 Peak 区域。 包含大量此状态中性粒的样本不适合做 scATAC-seq 测序。 未被激活、处于静息 (终末分化) 状态的中性粒细胞,尽管整体转录活性较低,但其染色质结构完整,各项常规质控指标 (如 TSS.enrichment、overlap Peaks 等) 通常处于正常范围,仅基因表达量 (nFeature_RNA、nCount_RNA) 与 ATAC 片段总量 (nCount_ATAC) 中位数相对较低。这属于生理现象,实际数据中也常见。 -
Q. 为什么在 Signac 多组学 (ATAC + RNA) 分析时,不用 pct_reads_in_peaks 指标来过滤细胞?
pct_reads_in_peaks (Peak 区 Reads 占比) 主要用于单组学 ATAC 质量控制,反映信噪比;单组学时没有其他数据支持,需要严格用它剔除低质量细胞。但在多组学数据中,RNA 信息可作为 ATAC 数据质控的互补。如果细胞的 RNA 数据表现好,即使 pct_reads_in_peaks 稍低也可能是生物学真实、有价值的细胞。部分亚型细胞天然 pct_reads_in_peaks 低,若强行筛选可能丢失关键信息。因此,Signac 在多组学中更关注 TSS.enrichment、nucleosome_signal 等稳健指标,通过 ATAC 与 RNA 交叉验证整体质量,无需强制用 pct_reads_in_peaks 过滤。
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